Главная Случайная страница


Категории:

ДомЗдоровьеЗоологияИнформатикаИскусствоИскусствоКомпьютерыКулинарияМаркетингМатематикаМедицинаМенеджментОбразованиеПедагогикаПитомцыПрограммированиеПроизводствоПромышленностьПсихологияРазноеРелигияСоциологияСпортСтатистикаТранспортФизикаФилософияФинансыХимияХоббиЭкологияЭкономикаЭлектроника






ПРОБЛЕМА ВНУТРИБОЛЬНИЧНОЙ ИНФЕКЦИИ

ПРОБЛЕМА ВНУТРИБОЛЬНИЧНОЙ ИНФЕКЦИИ

Во всем мире ВБИ является актуальной проблемой. Отечественные и зарубежные исследователи свидетельствуют: ВБИ возникает как минимум у 5-12% пациентов, поступающих в ЛПУ. Смертность от неё достигает 25%, а у новорождённых ВБИ - основная причина. В стационарах различного профиля периодически возникают эпидемические вспышки.

К ВБИ относят заболевания, возникающие у больных, инфицированных в стационаре; людей, получающих медицинскую помощь в поликлинике; медицинских работников, заразившихся при оказании помощи пациентам в стационаре, поликлинике; при оказании скорой и неотложной медицинской помощи.

В возникновении, поддержании и распространении ВБИ важнейшую роль играет медицинский персонал ЛПУ. В данном учебнике отмечены факторы, увеличивающие рост ВБИ, которые непосредственно связаны с медицинским персоналом.

Искусственно сформировался мощный механизм передачи возбудителей инфекций, связанный с инвазивными вмешательствами, лечебными и диагностическими процедурами, использованием медицинской аппаратуры.

Активизировался естественный путь передачи возбудителей инфекционных болезней, особенно воздушно-капельный и контактно-бытовой в условиях тесного общения пациентов и медицинского персонала ЛПУ.

Широкое использование для диагностики и лечения сложной техники приводит к травмированию кожного покрова и слизистых оболочек, формируя «ворота» для возбудителей инфекции. В связи с этим требуются особые методы стерилизации, а они часто отсутствуют.

Некоторые медицинские работники всё ещё рассматривают ВБИ (пневмония, пиелонефрит, воспалительные заболевания кожи и подкожного жирового слоя, в том числе постинъекционные инфильтраты) как неинфекционную патологию (табл. 1-1). Это приводит к несвоевременным профилактическим и противоэпидемическим мероприятиям.

В структуре ВБИ ведущее место - 75-80%, особенно в крупных городах, занимают гнойно-септические инфекции (ГСИ). Основные пути их передачи - контактный и воздушно-капельный (аэрозольный).

Факторы риска возникновения ГСИ:

• увеличение среди сотрудников числа носителей видов микроорганизмов резистентного типа;

• формирование госпитальных штаммов;

• увеличение обсеменённости воздуха, окружающих предметов и рук персонала;

• диагностические и лечебные манипуляции;

• несоблюдение правил размещения пациентов;

• несоблюдение правил инфекционной безопасности при уходе за больными.

Таблица 1-1. Постинъекционная гнойная патология

Среди заболеваний, относящихся к ВБИ, большинство связано с медицинскими вмешательствами. В частности, это постинъекционные осложнения (инфильтраты, абсцессы, флегмоны). Следует отметить, что многочисленные литературные данные не позволяют получить объективное представление о частоте ВБИ, развивающихся в результате диагностических и лечебных процедур, вакцинаций и профилактических осмотров.

У 69,3% госпитализированных пациентов с постинъекционными нагноениями вмешательства производились медицинскими работниками поликлиник и скорой помощи. Смертность людей с этой патологией составляет 2%, так как у 1,7% пациентов происходит генерализация инфекции.

Инъекции способствуют передаче ВИЧ и вирусов гепатита B, C, D. Так, в Элисте и соседних городах в 1988 г. был зарегистрирован первичный очаг ВИЧ - около 250 инфицированных. Увеличение числа ВИЧ-инфицированных, в том числе среди медицинского персонала, повышает риск передачи этой инфекции во время диагностических и лечебных процедур. Вирусные гепатиты составляют 6-7% в общей структуре ВБИ. При росте заболеваемости гепатитом B (рис. 1-1) риск инфицирования в ЛПУ увеличивается.

У медицинского персонала кишечные инфекции обнаруживают в 7-12%, из них сальмонеллёз - в 80%. Доказано, что в 7-9% сальмо-

 

Рис. 1-1. Заболеваемость гепатитом B

неллёз имеет внутрибольничный характер распространения. Исследователи отмечают, что медицинский персонал является основным резервуаром инфекции, за счет которого обеспечивается циркуляция и сохранение возбудителя, вызывающего формирование стойких очагов сальмонеллёза в ЛПУ.

Передача патогенных микроорганизмов от пациента к пациенту происходит так же, как и от него к персоналу. В частности, через руки персонала передаются: золотистый стафилококк, эпидермальный стафилококк, стрептококк A, энтерококк, эшерихии, клебсиелла, энтеробактер, протей, сальмонелла, синегнойная палочка, анаэробные бактерии, дрожжеподобные грибы, вирусы простого герпеса, полиомиелита, гепатита A. В связи с этим следует помнить, что мытьё рук - основная мера профилактики ВБИ.

Использование защитной одежды

Защитная одежда (халат, маска, фартук, очки) при правильном использовании становится барьером на пути передачи инфекции от сестры к пациенту и наоборот. В некоторых случаях она может создать ложное чувство безопасности и даже увеличить риск передачи ВБИ.

Халаты обеспечивают более полную защиту, чем полиэтиленовые или клеёнчатые фартуки, но они быстрее промокают и загрязняются. Применяя фартуки и халаты для ухода, предупреждающего передачу инфекции, необходимо ограничить их использование одной процедурой, после которой их следует сменить (например, после смены загрязнённого постельного или нательного белья пациента).

Перчатки (чистые или стерильные) - часть защитной одежды. Их надевают в следующих случаях:

• контакт с кровью;

• взаимодействие с семенной жидкостью, влагалищным секретом или со слизистой оболочкой носа, рта;

• контакт с любой биологической жидкостью, независимо от присутствия в ней крови;

• нарушение целостности кожи на руках сестринского персонала и/или у пациента;

• работа с материалами или предметами (катетерами, эндотрахе-альными трубками), загрязнёнными кровью или другими биологическими жидкостями (мочой, фекалиями). Стерильные перчатки можно надевать без посторонней помощи.

Внимание! Правша надевает сначала правую перчатку, а снимает левую.

Последовательность действий при надевании стерильных перчаток (рис. 1-5)

Подготовка к процедуре

• Разверните упаковку с перчатками (можно положить упаковку на стол).

Выполнение процедуры

• Возьмите перчатку за отворот левой рукой так, чтобы ваши пальцы не касались внутренней поверхности перчатки.

• Сомкните пальцы правой руки и введите их в перчатку.

• Разомкните пальцы правой руки и натяните перчатку на пальцы, не нарушая её отворота.

• Заведите под отворот левой перчатки I, III и IV пальцы правой руки, уже одетой в перчатку так, чтобы I палец правой руки был направлен в сторону I пальца на левой перчатке.

• Держите левую перчатку II-IV пальцами правой руки вертикально.

 

Рис. 1-5. Надевание стерильных перчаток (а-ж)

• Сомкните пальцы левой руки и введите её в перчатку. Завершение процедуры

• Расправьте отворот вначале на левой перчатке, надев её на рукав, затем на правой с помощью II и III пальцев, подводя их под подвёрнутый край перчатки.

В зависимости от ситуации перчатки лучше надеть на рукава халата. В тех случаях когда не требуется халат с длинными рукавами, перчатки закрывают запястье и часть предплечья.

Маски обеспечивают минимальную защиту от микроорганизмов, передающихся воздушно-капельным путём, даже если они закрытого хирургического типа.

Если материал, из которого сделана маска, обеспечивает хорошую фильтрацию микроорганизмов, то её защитные свойства теряются при неплотном прилегании к лицу. Она всё равно подлежит использованию, но носить её непрерывно можно не более 2 ч. При увлажнении от выдыхаемого воздуха маску следует сменить раньше, поскольку влажная тёплая ткань - оптимальная питательная среда для размножения микроорганизмов.

Обувь и медицинские шапочки не защищают от инфекции.

Защитные очки и щитки могут защитить глаза, нос и рот от попадания в них крови и другой биологической жидкости.

Пользуясь защитной одеждой, важно уметь правильно снять её, чтобы не загрязнить свои руки, одежду и окружающие предметы. Использованные перчатки снимайте в следующей последовательности (рис. 1-6).

 

Рис. 1-6. Снятие перчаток (а-з)

Пальцами правой руки в перчатке сделайте отворот на левой перчатке, касаясь её только с наружной стороны (рис. 1-6 а). Пальцами левой руки сделайте отворот на правой перчатке, также касаясь только внешней стороны (рис. 1-6 б). Снимите перчатку с левой руки, выворачивая её наизнанку и держа за отворот (рис. 1-6 в, г). Держите снятую с левой руки перчатку в правой руке (рис. 1-6 д). Левой рукой возьмите перчатку на правой руке за отворот с внутренней стороны (рис. 1-6 е) и снимите её с правой руки, выворачивая наизнанку

(рис. 1-6 ж). Обе перчатки (левая оказалась внутри правой) поместите в ёмкость с дезинфицирующим средством (если они многоразового использования) или выбросьте в непромокаемый мешок (рис. 1-6 з).

Чтобы снять халат, используйте следующую методику (рис. 1-7).

 

Рис. 1-7. Снятие халата

При надевании халата касайтесь руками только нижней части его рукавов, поскольку они были защищены перчатками и остались чистыми. Снимая халат со второй руки, выверните его наизнанку.

Снимая маску, держите её за завязки (рис. 1-8).

 

Рис. 1-8. Снятие маски

Обращение с постельным бельём

Постельное и нательное бельё в соматических отделениях ЛПУ меняют пациентам не реже 1 раза в 7 дней. Загрязненное выделениями должно меняться незамедлительно.

Методика смены белья подробно изложена в главе 4. При этой процедуре необходимо соблюдать общие меры предосторожности:

 

• надевать перчатки при контакте с бельём, загрязнённым биологическими жидкостями;

• не трясти постельные принадлежности, чтобы предупредить загрязнение окружающей среды;

• укладывать грязное бельё сразу в мешки (клеёнчатые или полиэтиленовые);

• не выносить его без мешка из помещения, в котором оно было снято;

• не сортировать и не встряхивать в помещении, где находятся люди;

• запрещается сортировка грязного белья в отделении;

• мокрое постельное и нательное бельё следует складывать в непромокаемый мешок и в нём переносить в другое помещение;

• класть использованное бельё на мебель и пол не разрешается. Допускается временное хранение (не более 12 ч) грязного белья в

отделениях при наличии санитарных комнат или других специально отведённых помещений в закрытой таре (металлических, пластмассовых бочках, плотных ящиках, других ёмкостях, подвергающихся дезинфекции). Персонал, работающий с грязным бельём, должен быть обеспечен санитарной одеждой. Чистое бельё хранится в оборудованных помещениях и шкафах.

Доставка загрязнённого белья в прачечную и чистого - в ЛПУ осуществляется с помощью тележек, маркированных установленным способом, упакованным и в закрытых контейнерах. Перевозка чистого и загрязненного белья в одной ёмкости не допускается.

Методы очистки

Тщательная очистка и мытьё могут удалить с поверхности большинство микроорганизмов. Их необходимо проводить до дезинфекции и стерилизации с помощью воды, механических приспособлений и детергентов. Возможны как ручная, так и аппаратная очистки (с помощью ультразвука), использование специальных детергентов и порошков. Ручная очистка более трудоёмка и не всегда возможна при деконтаминации некоторого оборудования или отдельных его частей (например, анестезиологического оборудования).

Уборка различных помещений ЛПУ предусматривает очистку как метод деконтаминации.

Все помещения следует содержать в чистоте. Необходимо помнить, что несоответствующая требованиям или неправильная уборка палат может увеличить риск распространения инфекции. Уборочный инвентарь (швабры, тряпки, щётки, вёдра) выделяют отдельно для различных помещений отделения и соответственно маркируют. После наведения порядка его промывают в горячей (65 °С) воде с моющими средствами и хранят в сухом виде.

Установлено, что количество бактерий в воздухе удваивается после подметания пола веником. Более безопасные и эффективные средства уборки - это пылесосы со специально встроенными воздушными фильтрами (он удаляет до 98% микроорганизмов вместе с пылью), хлопчатобумажные или нейлоновые щётки. Пол следует мыть с моющим средством два раза в день (а при необходимости и чаще).

Поверхности выше уровня пола нужно ежедневно чистить пылесосом или подвергать влажной уборке с моющим средством.

Не рекомендуют применять дезинфицирующие средства для уборки палат, холлов, поскольку они активны только в растворённом виде, а при быстром высыхании поверхностей их действие прекращается, и должный уровень дезинфекции не достигается. Рассыпанные или пролитые материалы, загрязнённые и содержащие биологические жидкости убирают немедленно с помощью соответствующего дезинфицирующего средства.

Ручная очистка оборудования. Всё оборудование перед очисткой необходимо разобрать, а затем отправить на дезинфекцию и стерилизацию.

Для мытья и удаления с поверхности оборудования биологических жидкостей (кровь, мокрота и др.) необходимо предварительно использовать холодную воду, так как горячая вода и некоторые дезинфицирующие средства фиксируют (коагулируют) белок, который трудно удалим на последующих этапах деконтаминации.

Для очистки поверхностей оборудования можно использовать 0,5-1% раствор гипохлорида натрия или другие имеющиеся средства.

Многие современные аппараты являются одновременно моющими и дезинфицирующими. При их использовании очистка изделий проводится более качественно и безопасно для персонала и пациента. Это возможно вследствие промывания сначала холодной, а затем тёплой водой с детергентом.

Дезинфекция

Дезинфекция направлена на разрыв цепочки инфекционного (эпидемического) процесса и ограничение функционирования одного из его основных звеньев - возбудителя заболевания. Её осуществляют с помощью физических и химических методов. Когда возможно, нужно использовать физические методы дезинфекции, поскольку они более надёжны, легче контролируются, нетоксичны.

Цель дезинфекции - уничтожение патогенных и условно-патогенных микроорганизмов на объектах внешней среды, функциональных помещений и палат ЛПУ, на медицинском оборудовании и инструментарии.

При некоторых ВБИ (ГСИ, кишечные инфекции) дезинфекция - практически единственный способ снижения заболеваемости в ЛПУ. Все штаммы возбудителей ВБИ обладают значительной устойчивостью к воздействию обычных рабочих растворов дезинфицирующих средств.

Использование для очаговой дезинфекции растворов с более низкой концентрацией, чем указано в методических указаниях, ведёт к появлению в стационарах ещё более устойчивых к внешним воздействиям госпитальных штаммов.

Виды дезинфекции представлены на рис. 1-9.

Рис. 1-9. Виды дезинфекции

Тактика и способы профилактической и очаговой дезинфекции существенно отличаются. Следует помнить, что дезинфекцию проводят с учётом эпидемической опасности и значимости ряда предметов и оборудования как предполагаемых факторов риска в реализации того или иного механизма передачи ВБИ.

Чтобы дезинфекция была эффективной, нужно знать назначение её средств и методов; способы и режимы их применения для обеззараживания объектов; рекомендуемую для этих целей аппаратуру и приборы; особенности обрабатываемых объектов; способы защиты персонала и находящихся в помещении пациентов.

Физические средства дезинфекции: высушивание, воздействие высокой температурой (сжигание, прокаливание, кипячение), пар, горячий воздух, ультрафиолетовое облучение и др.

При ультрафиолетовом облучении антимикробное действие обеспечивается УФ-лучами, исходящими от специальных настенных, потолочных, переносных и передвижных бактерицидных ультрафиолетовых установок. Их используют с целью снижения микробной обсеменённости воздуха и поверхностей различных объектов ЛПУ.

Сухой горячий воздух при температуре более 100 °С модифицирует органические вещества, растительные и животные волокна, а свыше 170 °С - обугливает их. Он оказывает бактерицидное, вирулицидное, фунгицидное, спороцидное и инсектицидное действие. Сухой горячий воздух (160-180 °С) применяют в воздушных стерилизаторах, камерах и аппаратах для дезинфекции посуды, инструментов, изделий медицинского назначения из металла, стекла, силиконовой резины, а в камерах при температуре 80-100 °С - для дезинсекции одежды, постельных принадлежностей и других вещей.

Водяной пар проникает вглубь обрабатываемых объектов, оказывает сильное антимикробное действие (вегетативные формы патогенных и условно-патогенных микроорганизмов погибают от воздействия пара при температуре 80 °С, а споровые формы - при 120 °С в течение 10 мин). В дезинфекционных камерах его применяют под давлением для обеззараживания одежды, постельных принадлежностей. Дезинфекцию аптечной и лабораторной посуды, изделий медицинского назначения и предметов ухода из стекла, кор-розионностойкого металла, изделий из текстильных материалов, резины, латекса и отдельных полимерных материалов осуществляют в паровых стерилизаторах.

Горячая вода (60-120 °С) оказывает антимикробное действие в отношении многих микроорганизмов, вегетативные формы которых погибают в течение 30 мин. Горячую воду с добавлением моющих средств используют для механического удаления загрязнений и уничтожения микроорганизмов при стирке белья, мытье посуды, уборке. Кипячение в воде при температуре 100 °С в течение 15-45 мин применяют для обеззараживания белья, посуды, инструментов, изделий

медицинского назначения, предметов ухода за больными, игрушек и других объектов. При добавлении в воду 2% раствора натрия гидрокарбоната антимикробное действие кипячения усиливается.

При соблюдении всех условий данный метод обеспечивает дезинфекцию высокого уровня.

Оборудование и инструментарий необходимо тщательно очистить, а потом положить в контейнер и залить водой. Воду нагревают до кипения. Дезинфекция начинается с этого момента и продолжается 5 мин. Для предупреждения коррозии в воду добавляют 2% раствор натрия бикарбоната. Использованные инструменты необходимо прокипятить или обработать в паровом стерилизаторе и высушить в течение дня. После кипячения воду из кипятильника слить и вытереть его насухо.

Оборудование, которое разрушается в результате кипячения, дезинфицируют в течение 5 мин при температуре 80 °С. При этом необходимо обеспечить точную регулировку температуры воды в кипятильнике.

Без стерилизации в паровом стерилизаторе дезинфекция кипящей водой белья, постельных принадлежностей, столовых приборов, лабораторной стеклянной посуды и инструментов возможна в некоторых типах моечных машин.

Максимальная эффективность достигается при использовании машин, в которых процессы очистки, кипячения и сушки совмещены и происходят последовательно. В них для обработки инструментов технологический цикл начинается с ополаскивания и мытья инструментов. На этом этапе удаляется большинство микроорганизмов, что позволяет сократить время дезинфекции (1 мин при температуре жидкости 80-85°С, 3 мин - при 70 °С, 10 мин - 63°С).

Уровень дезинфекции (высокий или низкий) зависит от типа машины и комплекса условий.

Химические средства дезинфекции составляют 7 групп, представленных в табл. 1-2. В основном химические средства применяют для дезинфекции термолабильного (не устойчивого к действию повышенных температур) оборудования многократного применения. Например, эндоскопические приборы требуют химической дезинфекции высокого уровня.

После химической дезинфекции оборудование необходимо промыть стерильной водой. При её отсутствии используют свежекипячёную воду. После ополаскивания оборудование хранят в сухом виде и предохраняют от загрязнения и потери стерильности.

Таблица 1-2. Средства дезинфекции

Дезинфекцию громоздкого оборудования проводят методом протирания ветошью, смоченной дезинфицирующим средством, с последующим просушиванием. На чистых поверхностях можно применять 70% раствор этилового спирта, в этом случае сушить поверхность необязательно.

Меры предосторожности при работе с дезинфицирующими средствами.

• Химические препараты, применяемые для дезинфекции, пред-стерилизационной обработки и стерилизации, обладают в различной степени и резорбтивными токсическими действиями.

• К работе с дезинфицирующими препаратами допускаются лица не моложе 18 лет, прошедшие соответствующий инструктаж по обязанностям, технике безопасности, мерам предосторожности и профилактике случайных отравлений, утверждённых соответствующими Правилами.

• Лица с повышенной чувствительностью к применяемым химическим средствам от работы с ними отстраняются.

• В специальных помещениях, оборудованных приточно-вытяж-ной вентиляцией, следует производить замачивание белья, посуды и других предметов в растворах дезинфицирующих средств; предстерилизационную обработку и стерилизацию изделий медицинского назначения химическими средствами; обработку пациентов и их вещей инсектицидами.

• Рабочие растворы дезинфицирующих средств необходимо готовить в хорошо проветриваемых помещениях.

• Хранят и выдерживают в них обрабатываемые объекты в плотно закрывающихся ёмкостях.

• Запасы препаратов надлежит хранить в местах, недоступных для общего пользования, используя непрозрачную посуду, в сухом, тёмном и прохладном помещении.

• Все дезинфекционные средства и растворы должны иметь этикетки с указанием названия, концентрации, даты изготовления и срока годности.

• В отделениях их хранят под замком в местах, недоступных для детей и лиц, не занимающихся дезинфекцией, отдельно от лекарственных препаратов.

• Необходимо строго соблюдать последовательность и точно выполнять все этапы очистки и дезинфекции.

• Это обеспечивает максимальное удаление с обрабатываемых объектов остатков моющих и дезинфицирующих средств.

• Все манипуляции с химическими веществами необходимо проводить в хорошо проветриваемых помещениях, используя спецодежду, перчатки ПВХ, герметичные очки ПО-2,ПО-3), универсальные респираторы (РУ-60М и др.).

• Меры предосторожности при работе с конкретным дезинфицирующим средством указаны в инструкции по применению препарата.

• После окончания работы руки моют и смазывают смягчающим кремом.

• При проведении дезинфекции необходимо строго соблюдать режим обработки (концентрацию рабочих растворов обеззараживающих средств, нормы их расхода, время дезинфекционной выдержки) с целью профилактики возможного неблагоприятного воздействия этих химических веществ на организм персонала и пациентов.

Способы и средства дезинфекции регламентируются действующими нормативными документами.

Стерилизация - полное освобождение какого-либо вещества или предмета от микроорганизмов путём воздействия на них физическими или химическими факторами. Данным методом необходимо обрабатывать все предметы или отдельные виды диагностической аппаратуры, соприкасающиеся с раной, кровью, инъекционными препаратами, с повреждёнными слизистыми оболочками. Стерилизация - важное звено комплекса неспецифической профилактики ВБИ.

Эта технология не имеет специфических особенностей применительно к профилактике конкретных ВБИ, ведь нестерильные изделия медицинского назначения - это факторы передачи возбудителей. В связи с чем стерилизация является последним барьером, защищающим пациента от таких инфекций. Изделия, подлежащие стерилизации, обрабатывают в несколько этапов (очистка, дезинфекция, предстерилизационная очистка, стерилизация).

В современных лечебных учреждения организованы ЦСО, в которых проводят:

• предстерилизационную обработку медицинского инструментария;

• стерилизацию изделий медицинского назначения, белья и перевязочного материала.

В то же время существует и децентрализованная (непосредственно в отделении) система предстерилизационной обработки и стерилизации.

Предстерилизационная обработка

Цель - удаление с изделий медицинского назначения белковых, жировых, лекарственных, механических загрязнений, в том числе невидимых (крови, слизи), дезинфицирующих средств, детергентов, что обеспечивает эффективность последующей стерилизации и безопасное использование простерилизованных изделий.

Для повышения эффективности предстерилизационной обработки и стерилизации в ЦСО проводят цветную реакцию на следы хлор-содержащих дезинфицирующих средств. Положительный результат свидетельствует о том, что в отделении, откуда инструменты были доставлены, первичная дезинфекция действительно проводилась, а отрицательный доказывает обратное.

Методика такова: ватным тампоном, смоченным реактивом, протирают исследуемый объект, и если есть синее окрашивание - первичная дезинфекция проводилась, если нет - не проводилась. В этом случае инструменты возвращают в отделение для первичной дезинфекции. При дезинфекции химическими средствами, не содержащими хлор, эта реакция не проводится.

Предстерилизационную обработку проводят ручным и механизированным способами.

Ручной способ

1. После дезинфекции объект необходимо промыть под струёй проточной воды в течение 30 с до полного удаления запаха дезинфицирующего средства.

2. Замачивание (полное погружение) изделия в одном из моющих растворов на 15 мин (0,5% раствор «Биолота» при температуре 40 °С или 0,5% раствор перекиси водорода с добавлением 0,5% раствора одного из синтетических моющих средств (CMC), а именно «Прогресс», «Лотос», «Лотос-автомат», «Айна», «Астра» при температуре

50 °С).

• Если моющий раствор, приготовленный из порошка «Биолот», порозовел в процессе использования, употреблять его не следует, так как эффективность очистки будет низкой.

Внимание! Раствор моющего средства «Биолот» используется однократно!

• Раствор, состоящий из перекиси водорода и СМС, можно применять в течение суток с момента изготовления, а также

подогревать до 6 раз (концентрация перекиси водорода при этом существенно не изменится).

Внимание! Моющий раствор подогревается только перед обработкой изделий медицинского назначения.

• Температуру раствора из порошка «Биолот» доводят до 40 °С (из других моющих средств до 50 °С), так как при комнатной температуре биологически активные вещества (ферменты) выделяются очень медленно, а при более высокой разрушаются. В последнее время появились новые моющие средства, которые не требуют подогревания и действуют при комнатной температуре (1% раствор бланизола, 0,4% раствор век-сайда, 0,2% раствор септадора при выдержке 30 мин).

• Существует группа дезинфицирующих веществ, позволяющих провести дезинфекцию и предстерилизационную очистку одномоментно (лизетол АФ, дюльбак ДТБ/л, при экспозиции 30 мин; 2% раствор виркона - 10 мин при комнатной температуре; гротонат - 30 мин при комнатной температуре; 3% раствор пероксимеда - 60 мин при температуре 50 °С).

3. Мытьё каждого изделия в том же растворе, где оно замачивалось, с помощью ерша или ватно-марлевого тампона в течение 30 с.

4. Ополаскивание проточной водой после использования «Биолота» в течение 3 мин; растворов перекиси водорода в CMC «Прогресс», «Маричка» - 5 мин; CMC «Астра», «Лотос», «Лотос-автомат» - 10 мин.

5. Ополаскивание дистиллированной водой в течение 30 с.

6. Сушка горячим воздухом при температуре 75-87 °С в сушильных шкафах.

7. Замачивают, моют и ополаскивают изделия в ваннах, раковинах, бачках и других ёмкостях, которые должны иметь кран (шланг) для струйной подачи воды.

При отсутствии медицинской перекиси водорода надо заменить её технической - марок А и Б. Если её вообще нет, изделия после промывания погружают в 1,5% раствор CMC и кипятят 15 мин, затем ополаскивают проточной водой с одновременной очисткой ёршиком в течение 10 мин.

«Биолот», перекись водорода и CMC можно заменить пищевой содой (бикарбонат натрия). После промывания проточной водой изделия кладут в 2% раствор бикарбоната натрия и кипятят 15 мин.

Ополаскивают проточной водой с одномоментной механической очисткой в течение 5 мин.

Изделие замачивают в 3% растворе бикарбоната натрия 15 мин, моют его 30 с, ополаскивают проточной водой в течение 5 мин.

Перекись водорода вызывает коррозию инструментов, сделанных из металлов, не стойких к ней. В связи с этим в моющий раствор, содержащий перекись водорода и CMC «Лотос», «Лотос-автомат», целесообразно добавлять ингибитор коррозии - 0,14% раствор олеата натрия.

Механический способ

Для механизированной предстерилизационной обработки шприцев, игл и хирургических инструментов используют специальные моечные и моечно-дезинфекционные (комбинированные) машины. Их работа основана на использовании одного из методов: струйного, ротационного, ершевания, ультразвукового. Методика проведения механизированной обработки зависит от типа используемого оборудования и должна соответствовать инструкции по эксплуатации.

При любом способе предстерилизационной обработки изделий применяют только официально разрешённые в практике здравоохранения средства. Они должны обладать хорошим моющим эффектом при минимальном пенообразовании, хорошей смываемостью, отсутствием токсичности, без необходимости подогрева, а также не оказывать коррозионного действия.

Металлические инструменты в результате эксплуатации, дезинфекции, предстерилизационной обработки, стерилизации могут иметь следы коррозии, в этом случае они подвергаются предстерили-зационной обработке с помощью специальных средств.

Качество предстерилизационной обработки (табл. 1-3) контролируют по пробам:

• азопирамовая и амидопириновая (на наличие крови);

• судан III (на загрязнение шприцев и других инструментов масляными веществами);

• фенолфталеиновая (на загрязнение шприцев и других инструментов щелочными компонентами моющих средств).

Таблица 1-3. Контроль качества предстерилизационной очистки (реакции на кровь)

 

Азопирамовая проба. Готовят 1-1,5% раствор солянокислого анилина в 95% растворе этилового спирта. В плотно закрытом флаконе при температуре 4 °С (в холодильнике) его можно хранить 2 мес, а в темноте при комнатной температуре (18-23 °С) не более 1 мес. Умеренное пожелтение реактива в процессе хранения без выделения осадка не снижает его рабочих качеств.

Раствор готовят непосредственно перед пробой (смешивают в равных количествах азопирам и 3% раствор перекиси водорода).

Рабочий раствор азопирама должен быть использован в течение 1-2 ч, иначе может появиться спонтанное розовое окрашивание. При температуре 25 °С раствор розовеет быстрее, поэтому его используют в течение 30-40 мин.

Нельзя подвергать проверке горячие инструменты, а также держать раствор при ярком свете, повышенной температуре (вблизи нагревательных приборов).

Амидопириновая проба. Готовят 5% раствор амидопирина в 95% растворе этилового спирта, который может храниться во флаконах с притёртой пробкой в холодильнике в течение одного месяца. 30% раствор уксусной кислоты и 3% перекиси водорода готовят на дистиллированной воде. Смешивают равные количества 5% спиртового раствора амидопирина, 30% раствора уксусной кислоты и 3% перекиси водорода перед употреблением.

Проба с азопирамом по чувствительности не уступает отменённой бензидиновой пробе и в 10 раз превосходит амидопириновую.

Стерилизация

Стерилизация изделий медицинского назначения должна обеспечить гибель микроорганизмов всех видов на всех стадиях развития. Поскольку к преобладающему большинству средств стерилизации (за исключением ионизирующего излучения) наибольшую устойчивость проявляют споры микроорганизмов, то стерилизующими являются методы, обладающие спороцидным действием.

Используются следующие методы стерилизации:

• термические: паровой, воздушный, глассперленовый;

• химические: газовый, химические препараты;

• радиационный;

• плазменный и озоновый (группа химических средств).

Выбор того или иного метода стерилизации конкретных изделий зависит от свойств объекта и самого метода - его достоинств и недостатков.

Изделия в упаковке стерилизуют при децентрализованной или централизованной системах, а также на промышленных предприятиях, выпускающих изделия медицинского назначения однократного применения. Изделия без упаковки стерилизуют только при децентрализованной системе в ЛПУ.

Паровой и воздушный методы стерилизации - самые распространённые в ЛПУ.

Паровой метод - надёжный, нетоксичный, недорогой, обеспечивает стерильность не только поверхности, но и всего изделия. Его осуществляют при сравнительно невысокой температуре, он обладает щадящим действием на обрабатываемый материал, позволяя стерилизовать изделия в упаковке, благодаря чему предупреждается опасность повторного обсеменения микроорганизмами.

Стерилизующий агент при этом методе - водяной насыщенный пар под избыточным давлением.

Стерилизацию проводят при следующих режимах:

• 141±1 °С под давлением 2,8 Бар - 3 мин;

• 134±1 °С под давлением 2,026 Бар - 5 мин;

• 126±1 °С под давлением 1,036 Бар - 10 мин.

Этим методом стерилизуют изделия из металлов, устойчивых к коррозии, стекла, текстильных материалов, резины, латекса.

В качестве упаковки используют стерилизационные коробки (биксы), пергамент, обёрточные бумаги (мешочную непропитанную, мешочную влагопрочную, упаковочную высокопрочную, двухслойную крепированную).

Чтобы пар хорошо проникал в различные точки стерилизаци-онной камеры, между изделиями и внутрь изделий из текстиля, очень важно соблюдать нормы загрузки как стерилизатора, так и бикса.

Срок хранения стерильного материала зависит от вида упаковки.

Паровой метод имеет и существенные недостатки, как-то: вызывает коррозию инструментов из нестойких металлов; превращаясь в конденсат, увлажняет стерилизуемые изделия, тем самым ухудшая условия их хранения и увеличивая опасность повторного обсеменения микроорганизмами.

Воздушный метод. Стерилизующий агент - сухой горячий воздух. Отличительная особенность метода - не происходит увлажнения

упаковки и изделий, и связанного с этим уменьшения срока стерильности, а также коррозии металлов. Недостатки метода:

• медленное и неравномерное прогревание стерилизуемых изделий;

• необходимость использования более высоких температур;

• невозможно использовать для стерилизации изделий из резины, полимеров;

• неосуществимость использовать все имеющиеся упаковочные материалы.

Режимы воздушной стерилизации:

1) температура 200+3 °С, время 30 мин;

2) температура 180+3 °С, время 40 мин;

3) температура 160+3 °С, время 120 мин.

Эффективность воздушной стерилизации во многом зависит от равномерного проникновения горячего воздуха к стерилизуемым изделиям, что достигается принудительной циркуляцией воздуха со скоростью 1 м/с и соблюдением норм загрузки стерилизатора.

Паровой и воздушный методы стерилизации экологически чистые.

Газовый метод проводят при 18-80 °С. Изделия стерилизуют в упаковках.

При газовой стерилизации используют этилен-оксид и его смеси, формальдегид.

В газообразном состоянии этилен-оксид не вызывает коррозии металлов, не портит изделий из кожи, шерсти, бумаги, пластмасс. Он является сильным бактерицидным, спороцидным и вирулицид-ным средством. Газ хорошо приникает в обрабатываемый материал.

Недостаток этилен-оксида - его токсичность для персонала и взрывоопасность при нарушении техники безопасности. Процесс стерилизации имеет продолжительный цикл. Он редко используется

в ЛПУ.

Формальдегид по своим качествам не уступает, а по некоторым показателям пре

Последнее изменение этой страницы: 2016-06-08

lectmania.ru. Все права принадлежат авторам данных материалов. В случае нарушения авторского права напишите нам сюда...